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BioCheck pd-1酶免疫測定試劑盒說明書

 更新時間:2019-01-11 點擊量:1458

BioCheck,Inc。為(wei) 醫療保健市場和研究市場開發,製造和分銷免疫診斷檢測試劑盒和研究試劑。

我們(men) 的新產(chan) 品包括用於(yu) 研究應用的兔單克隆抗體(ti) ,用於(yu) 小鼠和人類Id1,Id2,Id3和Id4蛋白,抗體(ti) 用於(yu) HMGA2的研究應用。

BioCheck pd-1酶免疫測定試劑盒說明書(shu)

PD-1 ENZYME IMMUNOASSAY TEST KIT

pd-1酶免疫測定試劑盒

Enzyme Immunoassay for the Quantitative Determination of PD-1 Concentration in Human Serum and Plasma

 

酶免疫法定量測定人血清和血漿中Pd-1濃度

 

目錄編號:bc-1301

 

隻作研究用途,而非用於(yu) 診斷程序。

 

介紹

 

程序性細胞死亡蛋白1(pd-1,CD 279,pdd 1)是一種細胞表麵受體(ti) ,對調節T細胞炎症活動和維持外周免疫耐受至關(guan) 重要。 係統(1)。pd-1可以與(yu) 配體(ti) pd-l1和pd-l2相互作用。pd-1具有胞外IGV結構域、跨膜結構域和帶有兩(liang) 個(ge) 磷酸化位點(shp-1和shp-2)的胞內(nei) 尾。 下調免疫係統,抑製T細胞活性(2)。抗原識別後,活化的T細胞在其表麵表達pd-1,產(chan) 生幹擾素,誘導P的表達。 d-L1,從(cong) 而促進細胞凋亡或細胞死亡。(3)當pd-1配體(ti) 被腫瘤細胞劫持時,其異常表達抑製了免疫調節T細胞的活化,導致疾病進展。 <物>離子 (4).

 

血清和血漿中Pd-1水平升高與(yu) 類風濕關(guan) 節炎和皮膚硬化有關(guan) (5,6)。Pd-1主要由腫瘤浸潤的T細胞(7)表達.進一步再 研究表明,使用針對pd-1免疫檢查點的單克隆抗體(ti) 有助於(yu) 在理解和治療黑色素瘤和其他內(nei) 翻等癌症方麵取得突破性進展。 非小細胞肺癌(4)。

 

測定原理

 

pd-1酶聯免疫吸附試驗是以固相酶聯免疫吸附試驗為(wei) 基礎的.該檢測係統利用一種*的單克隆抗體(ti) 對,針對一種*的抗原性測定方法。 Pd-1分子上的螞蟻。用一種小鼠抗PD-1單克隆抗體(ti) 進行固相固定(在微滴度井上).另一種與(yu) 辣根結合的單克隆抗pd-1抗體(ti) H過氧化物酶(HRP)存在於(yu) 酶的共軛溶液中。測試樣品被允許與(yu) 這兩(liang) 種抗體(ti) 順序反應,導致pd-1分子被夾在固體(ti) p之間。 Hase和酶聯抗體(ti) 。在室溫下進行兩(liang) 次單獨的60分鍾孵育後,用洗滌緩衝(chong) 液衝(chong) 洗水井,除去未結合的標記抗體(ti) 。TMB試劑添加了一個(ge) ND在黑暗條件下孵育20分鍾,形成藍色。隨著停止解決(jue) 方案的添加,顏色開發停止,將顏色更改為(wei) 黃色。這,這個(ge) ,那,那個(ge) Pd-1濃度與(yu) 樣品的顯色強度成正比.在450 nm處分光度法測定吸光度。

試劑準備

 

所有試劑在使用前應允許達到室溫(18-25°C)。

 

2.對於(yu) 每次測試運行,準備一個(ge) 新的標準集。

 

3.用標準/樣品稀釋劑稀釋50~10 ng/mL。用標準/樣品稀釋劑製備10 ng/mL標準的雙倍係列稀釋劑:

 

a.10 ng/mL:0.12mL 50 ng/mL,0.48mL標準品/樣品稀釋劑b。5 ng/mL:0.25mL 10 ng/mL標準品/樣品稀釋劑c。2.5納克/毫升:0.25毫升5納克/毫升標準品/樣品 稀釋劑d.1.25 ng/mL:0.25 mL,2.5 ng/ml,0.25 mL標準品/樣品稀釋劑e。0.625 ng/mL:1.25ng/mL標準品/樣品稀釋劑f的0.25ng/mL。0.313 ng/mL:0.25mL,0.625 ng/mL 0。 25 mL標準/樣品稀釋劑

 

h.0.156 ng/mL:0.25mL,0.313 ng/mL,0.25mL標準稀釋劑I。0 ng/mL:0.25 mL標準稀釋劑

 

病人樣本在使用前需要稀釋4倍。製備一係列小管(即1.5 mL微離心管),將60L血清與(yu) 180 L標準/樣品稀釋劑混合。

 

6.工作洗滌緩衝(chong) 器:從(cong) 20倍庫存中製備1倍洗滌緩衝(chong) 液。加入50毫升的20倍洗滌緩衝(chong) 液庫存到950毫升的直接水。工作洗滌緩衝(chong) 液在2~8°C溫度下穩定運行30天.注:任何水晶 由於(yu) 高鹽濃度而可能出現的S,必須在室溫下重新溶解,然後再進行稀釋。

檢測程序

 

準備標準。見試劑準備。

 

稀釋樣品1:4稀釋。見試劑準備。

 

確保所需數量的塗層井在保持架。

 

配發Pd-1標準的100mL,並將樣品稀釋到適當的井中.

 

室溫(18-25°C)孵育60 min.

 

將培養(yang) 皿中的內(nei) 容物倒入廢容器中,將孵化器中的混合物移除。用300mL工作水洗緩衝(chong) 液衝(chong) 洗微滴水井5次。把水井打到吸水性紙或吸塵器上。 用毛巾去除所有殘留的水滴。

 

將Pd-1工作酶結合劑的100mL配伍到每口井中.

 

8.室溫(18-25°C)孵育60 min.

 

9.將培養(yang) 皿中的內(nei) 容物倒入廢容器中,將孵化器中的混合物移除。用300 ul工作水洗緩衝(chong) 液衝(chong) 洗微滴水井5次。把水井打到吸收紙上或 紙巾去除所有殘留水滴。

 

10.在每口井中分配100mL TMB溶液。

 

11.室溫(18-25°C)孵育20分鍾.

 

12.通過在每口井中加入100mL的停止溶液來停止反應。

 

13.輕輕攪拌30秒。重要的是要確保所有的藍色*變成黃色。

 

14.在450 nm處讀取吸光度,15分鍾內(nei) 使用微滴度良好的閱讀器。

 

統計

 

計算每組參考標準、對照和樣品的平均吸光度值(OD 450)。

 

通過繪製每個(ge) 參考標準的平均吸光度(以納克/毫升為(wei) 單位)繪製在圖表紙上,並在垂直(Y)軸上繪製吸光度,從(cong) 而構造一條標準曲線。 在水平(X)軸上的比率。

 

用每個(ge) 樣品的平均吸光度值,從(cong) 標準曲線上測定相應的Pd-1濃度(ng/mL)。取決(jue) 於(yu) 經驗和/或計算機的可用性 能力,可以采用其他的數據縮減方法。

 

4.樣品的檢出值應乘以稀釋倍數為(wei) 4,得到Pd-1的結果為(wei) ng/ml。

 

標準曲線實例

 

一個(ge) 典型的標準運行結果,吸光度讀數在450 nm處顯示在Y軸上,而pd-1濃度顯示在X軸上。注:本標準曲線為(wei) 圖示目的。 僅(jin) 用於(yu) 計算未知數,不應用於(yu) 計算未知數。每個(ge) 實驗室必須在每個(ge) 實驗中生成自己的數據和標準曲線。

 

 

工作特性

 

從(cong) 零標準的平均值用2SD法測定的Pd-1ELISA低可檢出濃度為(wei) 0.15ng/ml。

 

精度a.在一次測定中,通過對三種不同樣品的重複測定,確定了內(nei) 測精密度.批內(nei) 可變性如下所示:

 

 

b. 在一係列單獨校準的測試中,通過對三個(ge) 不同樣本的重複測量,確定了運行間精密度。試驗間的可變性顯示為(wei) 貝爾。 表示突然疼痛所發出的聲音

 

3、回收率和線性研究。回收樣品加入已知的Pd-1水平,並一式兩(liang) 份進行測定。平均回收率為(wei) 105.3%。

 

b.對三個(ge) 樣品進行連續稀釋,以確定線性度。平均回收率為(wei) 99.6%。

 

 

REFERENCES

 

  1. Fife, B. T., & Pauken, K. E. (2011). The role of the PD-1 pathway in autoimmunity and peripheral tolerance. Annals of the New York Academy of Sciences, 1217(1), 45-59
  2. Riella, L. V., Paterson, A. M., Sharpe, A. H., & Chandraker, A. (2012). Role of the PD-1 Pathway in the Immune Response. American Journal of Transplantation : Official Journal of the American Society of Transplantation and the American Society of Transplant Surgeons, 12(10), 2575–2587.
  3. Zak, Krzysztof & Kitel, Radosław & Przetocka, Sara & Golik, Przemysław & Guzik, Katarzyna & Musielak, Bogdan & Dömling, Alexander & Dubin, Grzegorz & Holak, Tad. (2015). Structure of the Complex of Human Programmed Death 1, PD-1, and Its Ligand PD- L1. Structure. 23. . 10.1016/j.str.2015.09.010.
  4. Zoran Gatalica, Carrie Snyder, Todd Maney, Anatole Ghazalpour, Daniel Holterman, Nianqing Xiao, Peggy Overberg, Inga Rose, Gargi D. Basu, Semir Vranic, Henry T. Lynch, Daniel D. Von Hoff and Omid Hamid. Programmed Cell Death 1 (PD-1) and Its Ligand (PD-L1) in Common Cancers and Their Correlation with Molecular Cancer Type. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. December 1 2014 (23) (12) 2965- 2970.
  5. Greisen, S., Rasmussen, T., Stengaard-Pedersen, K., Hetland, M., Hørslev-Petersen, K., Hvid, M., & Deleuran, B. (2013). Increased soluble programmed death-1 (sPD-1) is associated with disease activity and radiographic progression in early rheumatoid arthritis. Scandinavian Journal of Rheumatology,43(2), 101-108.
  6. Yanaba, K., Hayashi, M., Yoshihara, Y., & Nakagawa, H. (2016). Serum levels of soluble programmed death-1 and programmed death ligand-1 in systemic sclerosis: Association with extent of skin sclerosis. The Journal of Dermatology,43(8), 954-957.

7. Ahmadzadeh, M., Johnson, L. A., Heemskerk, B., Wunderlich, J. R., Dudley, M. E., White, D. E., & Rosenberg, S. A. (2009). Tumor antigen–specific CD8 T cells infiltrating the tumor express high levels of PD-1 and are functionally impaired. Blood, 114(8), 1537–1544