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KOD-Plus-Neo產品說明書

 更新時間:2023-11-25 點擊量:1334

KOD-Plus-Neo是基於(yu) 一種ji端嗜熱的海洋古生菌Thermococcus kodakarensis聚合酶。這種聚合酶由於(yu) 其高效的3’-5核酸外切酶活性(校對活性)。該產(chan) 品含有一種du特的延伸增強劑",可抑製傳(chuan) 統PCR產(chan) 生的平台效應"。因此,與(yu) 先前版本的KOD-PlusKOD-201)相比,該試劑表現出更高的擴增效率和延伸能力。此外,這種酶對於(yu) PCR延伸步驟僅(jin) 需要30/kb。這有利於(yu) 長片段PCR。這種酶含有兩(liang) 種抑製聚合酶3’-5’核酸外切酶活性的抗KOD 聚合酶抗體(ti) 和,從(cong) 而支持熱啟動PCR

產(chan) 品特點

Ø 普通菲律宾新利网上娱乐 聚合酶高80倍的PCR保真度

Ø 與(yu) 傳(chuan) 統PCR相比,延伸增強劑"能夠實現更高的擴增效率和延伸能力

1.png

Ø PCR延伸步驟隻需要30/kb

Ø 兩(liang) 步循環條件可用於(yu) 使用≥20 mer引物的擴增(退火溫度,Tm>63°C)。

2.jpg

產(chan) 品組分

KOD -Plus- Neo (1.0 U/μL)*

200 μL×1

10 x PCR Buffer for KOD -Plus-Neo

1 mL×1

25 mM MgSO4

1 mL×1

2 mM dNTPs

1 mL×1

引物設計

Ø 引物應為(wei) 22-35個(ge) 堿基,Tm>63

Ø 引物的最佳GC含量為(wei) 45-60%53的理想GC含量分別為(wei) 60-70%40-50%

Ø 片段擴增的引物應為(wei) 25-35個(ge) 堿基,Tm>65°C

Ø 不能使用含有肌苷的引物

Ø 建議使用最近鄰法計算引物的Tm。本手冊(ce) 中的Tm值是使用以下參數使用該方法計算的。Na+濃度:50 mM 寡核苷酸濃度:0.5 µM

PCR產(chan) 物的克隆

Ø KOD-Plus-Neo由於(yu) 其3-5核酸外切酶活性。因此,PCR產(chan) 物為(wei) 平端產(chan) 物,可以根據平端克隆方法進行克隆。

Ø KOD-Plus-NeoPCR產(chan) 物應在限製性內(nei) 切酶處理之前進行純化。KOD 聚合酶的5-3核酸外切酶活性在PCR反應結束時仍然存在。

Ø 克隆KOD 聚合酶產(chan) 生的PCR產(chan) 物推薦專(zhuan) 用TA克隆試劑盒“TArget clone™ -Plus- (Code No. TAK-201)"

實驗步驟

1. 標準反應體(ti) 係配置

反應物準備前,除酶溶液外,所有成分均應wan全解凍。

組分

體(ti) 積

終濃度

10x Buffer for KOD -Plus- Neo

5 μL

1x

2 mM dNTPs

5 μL

0.2 mM each

25 mM MgSO4

3 μL

1.5 mM

10 pmol/μL Primer #1

0.75–1.5 μL

0.15–0.3 µM

10 pmol/μL Primer #2

0.75–1.5 μL

0.15–0.3 µM

Template

X μL

Genomic ≤ 200 ng/50 μL

Plasmid ≤ 50 ng/50 μL

c ≤ 200 ngRNA equiv.)/50 μL

PCR grade water

Y μL


KOD -Plus- Neo (1.0 U/μL)

1 μL

1.0 U/50 μL

總體(ti) 積

50 μL


**不要使用其它試劑盒或其它公司的dNTP

注意:

最佳引物濃度為(wei) 0.3 µM。在長片段(≥10kb)的情況下,降低引物濃度(0.15µM)可能會(hui) 產(chan) 生更有效的擴增。

二甲基亞(ya) 碸DMSO(終濃度2-5%)的添加有利於(yu) 擴增富含GC的靶標。在DMSO存在的情況下,PCR保真度不會(hui) 降低(參見步驟2,循環條件)。

c或基因組中的汙染RNA會(hui) 通過螯合Mg2+來抑製PCR反應。應使用<200 ng RNA的模板進行PCR

模板的質量應通過電泳檢查。模板的長度和純度會(hui) 影響擴增結果

含有尿嘧啶的模板不能用於(yu) 擴增。

對於(yu) PCR反應,建議使用薄壁管。建議總反應體(ti) 積為(wei) 50 μL

2. 循環條件

推薦≥20 mer引物,Tm>63°C的兩(liang) 步循環條件用於(yu) 有效擴增。

3.jpg

兩(liang) 步循環

如果引物Tm值超過63°C,建議采用兩(liang) 步循環。

4.jpg

注意:

對於(yu) 使用低拷貝模板的擴增或長片段(>10kb)的擴增,更長的延伸時間(高達1 min/kb)或更高的Mg2+濃度(高達2 mM終濃度)可以提高產(chan) 率。

二甲基亞(ya) 碸DMSO(終濃度2-5%)的添加可能有利於(yu) 擴增富含GC的片段。所用DMSO的濃度應根據引物的Tm來確定。

<25 mer or Tm <68: 2%

25 mer or Tm 68: 5%

如果擴增失敗,可能需要3步循環

步循環

當引物的Tm小於(yu) 63℃時,應使用三步循環。

5.jpg

注意:

對於(yu) 使用低拷貝模板的擴增或長片段(>10kb)的擴增,更長的延伸時間(高達1 min/kb)或更高的Mg2+濃度(高達2 mM終濃度)可以提高產(chan) 率。

二甲基亞(ya) 碸DMSO(終濃度2-5%)的添加可能有利於(yu) 擴增富含GC的片段。

降落PCR

如果在2步和3步循環條件下觀察到非特異性擴增(在PCR產(chan) 物電泳後觀察到額外的條帶),降落PCR可以提高特異性。

6.jpg

注意:

對於(yu) 使用低拷貝模板的擴增或長片段(>10kb)的擴增,更長的延伸時間(高達1 min/kb)或更高的Mg2+濃度(高達2 mM終濃度)可以提高產(chan) 率。

二甲基亞(ya) 碸DMSO(終濃度2-5%)的添加可能有利於(yu) 擴增富含GC的片段。所用DMSO的濃度應根據引物的Tm來確定。

<25 mer or Tm <68: 2%

25 mer or Tm 68: 5%

應用實例

性能數據:

1. PCR保真度

TArget克隆技術對從(cong) 人基因組中擴增的人β-珠蛋白基因產(chan) 物進行序列分析,測定突變頻率KOD-Plus-Neo表現出ji好的保真度,突變頻率與(yu) 以前版本的酶(KOD-Plus-)相同。

7.png

2. 延伸能力

根據每種酶的推薦條件,通過幾種PCR酶從(cong) 人類基因組中擴增出各種大小的片段KOD-Plus-Neo成功擴增了17.5 kb片段

8.jpg

3. 低拷貝模板擴增

使用0.5 ng c模板擴增四個(ge) 基因。模板由HeLa細胞的總RNA合成。KOD-Plus-Neo成功擴增了所有基因。

9.jpg

4. 延伸速度

不同的擴增時間從(cong) 人類基因組50ng)中擴增β-珠蛋白基因(3.6 kb)。KOD-Plus-Neo可以用30/kb的延長時間擴增3.6 kb的靶標。

10.jpg

應用數據:

1. 各種蛋白激酶片段的擴增

利用HeLa細胞總RNA合成的c擴增各種蛋白激酶開放閱讀框。KOD-Plus-Neo成功擴增了所有片段。

2. 長片段擴增

使用不同濃度的引物從(cong) 人類基因組中擴增長片段。過多的引物會(hui) 抑製擴增。因此,應使用約0.15 µM的較低引物濃度擴增長片段(>10 kb)。

12.jpg

常見問題及解決(jue) 辦法

問題

可能的原因

解決(jue) 辦法

無產(chan) 物或低產(chan) 量

循環條件不合適

使用三步循環,將退火溫度逐漸降低至最大Tm-5–10°C

延伸時間延長至1分鍾/kb

將循環次數增加2-5個(ge) 循環

Mg2+濃度低

Mg2+濃度增加至2 mM

目標序列GC含量高

加入25%DMSO

引物的質量和/濃度問題

引物濃度逐步降低至0.15 µM

使用新的引物

重新設計引物

模板的質量和/濃度問題

檢查模板的質量

增加模板濃度

酶濃度低

將酶濃度提高至1.5–2.0 U/50 μL

彌散條帶或雜帶

循環條件不合適

將循環次數減少2-5個(ge) 循環

從(cong) 3步循環更改為(wei) 2步循環

從(cong) 2步循環更改為(wei) 降落PCR

引物的質量問題

使用新的引物

重新設計引物

模板太多

減少模板濃度

Mg2+濃度太高

MgSO4逐步降低至1.0 mM

酶濃度太高

將酶濃度降至0.50.8 U/50 μL

TA克隆效率差

PCR產(chan) 物具有平末端

使用專(zhuan) 用TA克隆試劑盒TArget clone-Plus-(Code No. TAK-201)

參考文獻

1) Takagi M, Nishioka M, Kakihara H, Kitabayashi M, Inoue H, Kawakami B, Oka M, and Imanaka T., Appl Environ Microbiol., 63: 4504-10 (1997).

2) Hashimoto H, Nishioka M, Fujiwara S, Takagi M, Imanaka T, Inoue T and Kai Y, J Mol Biol., 306: 469-77 (2001).

3) Mizuguchi H, Nakatsuji M, Fujiwara S, Takagi M and Imanaka T, J Biochem., 126: 762-8 (1999).

4) Fujii S, Akiyama M, Aoki K, Sugaya Y, Higuchi K, Hiraoka M, Miki Y, Saitoh N, Yoshiyama K, Ihara K, Seki M, Ohtsubo E and Maki H, J. Mol. Biol., 289: 835-850 (1999).

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